IBPPM RAS publications
  1. Alen’kina S.A., Nikitina V.E. Stimulating effect from lectins of associative bacteria of the genus Azospirillum on the germination and morphometric characteristics of spring wheat sprouts in simulated abiotic stress // Russian Journal of Plant Physiology. – 2021. – Vol. 68, No 2. – P. 315-321.
  2. Alen’kina S.A., Payusova O.A. , Nikitina V.E. Effect of Azospirillum lectins on the activities of wheat-root hydrolytic enzymes" // Plant and Soil. – 2006. – V.283, № 1-2. – P. 147-151.
  3. Alen’kina S.A., Romanov N.I., Nikitina, V.E. Regulation by Azospirillum lectins of the activity of antioxidant enzymes in wheat seedling roots under short-term stresses // Braz. J. Bot. – 2018. – Vol. 41. – P. 579-587. DOI: 10.100 7/s40415-0 18-0489-1.
  4. Alen’kina S.А., Nikitina V.Е. Change in the ratio of the activities of different types of proteases and their inhibitors in plant roots exposed to Azospirillum lectins // J. Plant Growth Regul. – 2017. – Vol. 36. – P. 522-527. DOI 10.1007/s00344-016-9658-2.
  5. Alenkina I.V., Oshtrakh M.I. Tugarova A.V., Biró B., Semionkin V.A., Kamnev A.A. Study of the rhizobacterium Azospirillum brasilense Sp245 using Mössbauer spectroscopy with a high velocity resolution: Implication for the analysis of ferritin-like iron cores // J. Molec. Struct. – 2014. – Vol. 1073. – P. 181-186. DOI: 10.1016/j.molstruc.2014.04.084.
  6. Alen'kina S.A., Roschupkina K.D., Nikitina V.E. Study of the possible involvement of Azospirillum lectins in the mechanisms of adaptive response of plants exposed to heavy metal salts // Journal of Stress Physiology & Biochemistry. – 2019. – Vol. 15, No.1. – P. 32-40.
  7. Belyakov A.E., Burygin G.L., Arbatsky N.P., Shashkov A.S., Selivanov N.Yu., Matora L.Yu., Knirel Yu.A., Shchyogolev S.Yu. Identification of an O-linked repetitive glycan chain of the polar flagellum flagellin of Azospirillum brasilense Sp7 // Carbohyd. Res. – Vol. 361.– 2012. – P. 127-132.
  8. Bogatyrev V.A., Dykman L.A., Matora L.Yu., Schwartsburd B.I. The serotyping of Azospirillum spp. by cell-gold immunoblotting // FEMS Microb. Lett. – 1992. – V. 96. – P. 115-118.
  9. Boiko A.S., Dmitrenok A.S., Fedonenko Yu.P., Zdorovenko E.L., Konnova S.A., Knirel Y.A., Ignatov V.V. Structural analysis of the O-polysaccharide of the lipopolysaccharide from Azospirillum brasilense Jm6B2 containing 3-O-methyl-D-rhamnose (D-acofriose) // Carbohydr. Res. – 2012. – Vol. 352.
  10. Borisov I.V., Schelud’ko A.V., Petrova L.P., Katsy E.I. Changes in Azospirillum brasilense motility and the effect of wheat seedling exudates // Microbiol. Res. – 2009. – V. 164, № 5. – P. 578–587. – doi: 10.1016/j.micres.2007.07.003.
  11. Borodina I.A., Zaitsev B.D., Burygin G.L., Guliy O.I. Sensor based on the slot acoustic wave for the non-contact analysis of the bacterial cells in the conducting suspensions // Sens. Actuators B: Chem. – 2018. – V. 268. – P. 217–222. DOI: 10.1016/j.snb.2018.04.063.
  12. Boyko A.S., Konnova S.A., Fedonenko Yu.P., Zdorovenko E.L., Smol’kina O.N., Kachala V.V., Ignatov V.V. Structural and functional peculiarities of the lipopolysaccharide of Azospirillum brasilense SR55 isolated from the roots of Triticum durum // Microbial. Res. – 2011. – V. 166. – P. 585-593.
  13. Bukharov A.V., Skvortsov I.M., Ignatov V.V., Shashkov A.S., Knirel Y.A., Dabrowski J. Structure of the O-specific polysaccharide of Xanthomonas campestris NCPPB 45 lipopolysaccharide // Carbohydr. Res. – 1993. – V. 241. – P. 309-316.
  14. Bunin V.D., Angersbach A.K., Mehta S.K., Guliy O.I. Use of an optical sensor to directly monitor the metabolic activity of growing bacteria // Talanta. – 2021. – Vol. 234. – 122590.
  15. Burygin G.L., Kargapolova K.Y., Kryuchkova Y.V. et al. Ochrobactrum cytisi IPA7.2 promotes growth of potato microplants and is resistant to abiotic stress // World J. Microbiol. Biotechnol. – 2019. – Vol 35. – 55.
  16. Dykman L.A., Staroverov S.A., Guliy O.I., Ignatov O.V., Fomin A.S., Vidyasheva I.V., Karavaeva O.A., Bunin V.D., Burygin G.L. Preparation of miniantibodies to Azospirillum brasilense Sp245 surface antigens and their use for bacterial detection // J. Immunoassay Immunochem. – Vol. 33(2). – 2012. – P. 115-127.
  17. Evseeva N.V., Matora L.Yu., Burygin G.L., Dmitrienko V.V., Shchyogolev S.Yu. Effect of Azospirillum brasilense Sp245 lipopolysaccharide on the functional activity of wheat root meristematic cells // Plant Soil. - 2011. – Vol. 346. – P. 181–188.
  18. Fedonenko Yu.P., Burygin G.L., Sigida E.N., Popova I.A., Surkina A.K., Zdorovenko E.L., Konnova S.A. Immunochemical characterization of the capsular polysaccharide from the Azospirillum irakense KBC1 // Curr. Microbiol. – 2013. – V. 67. – P. 234-239.
  19. Fedonenko Yu.P., Konnova O.N., Zatonsky G.V., Konnova S.A., Kocharova N.A., Zdorovenko E.L., Ignatov V.V. Structure of the O-polysaccharide from the Azospirillum lipoferum Sp59b lipopolysaccharide // Carbohydr. Res. – 2005. – Vol. 340. – P. 1259-1263.
  20. Fedonenko Yu.P., Konnova O.N., Zatonsky G.V., Shashkov A.S., Konnova S.A., Zdorovenko E.L., Ignatov V.V., Knirel Yu.A. Structure of the O-specific polysaccharide of the lipopolysaccharide of Azospirillum irakense KBC1 // Carbohydr. Res. – 2004. – Vol. 339. – P. 1813-1816.
  21. Fedonenko Yu.P., Konnova O.N., Zdorovenko E.L., Konnova S.A., Zatonsky G.V., Shashkov A.S., Ignatov V.V., Knirel Y.A. Structural analysis of the O-polysaccharide from the lipopolysaccharide of Azospirillum brasilense S17 // Carbohydr. Res. – 2008. – Vol. 343. – P. 810-816.
  22. Fedonenko Yu.P., Zatonsky G.V., Konnova S.A., Zdorovenko E.L., Ignatov V.V. Structure of the O-specific polysaccharide of the lipopolysaccharide of Azospirillum brasilense Sp245 // Carbohydr. Res. – 2002. – Vol. 337. – P. 869-872.
  23. Fedonenko Yu.P., Zdorovenko E.L., Konnova S.A., Kachala V.V., Ignatov V.V. Structural analysis of the O-antigen of the lipopolysaccharide from Azospirillum lipoferum SR65 // Carbohydr. Res. – 2008. – Vol. 343. – P.2841-2844.
  24. Filip’echeva Y., Shelud’ko A., Prilipov A., Telesheva E., Mokeev D., Burov A., Petrova L., KatsyE. Chromosomal flhB1 gene of the alphaproteobacterium Azospirillum brasilense Sp245 is essential for correct assembly of both constitutive polar flagellum and inducible lateral flagella // Folia Microbiol. – 2018. – Vol. 63, N 2. – P. 147-153. DOI: 10.1007/s12223-017-0543-6.
  25. Filip’echeva Y.A., Shelud’ko A.V., Prilipov A.G., Burygin G.L., Telesheva E.M., Yevstigneyeva S.S., Chernyshova M.P., Petrova L.P., KatsyE.I. Plasmid AZOBR_p1-borne fabG gene for putative 3-oxoacyl-[acyl-carrier protein] reductase is essential for proper assembly and work of the dual flagellar system in the alphaproteobacterium Azospirillum brasilense Sp245 // Can. J. Microbiol. – 2018. – Vol. 64. – P. 107-118. DOI: 10.1139/cjm-2017-0561.
  26. Filip’echeva Y.A., Shelud’ko A.V., Prilipov A.G., Burygin G.L., Telesheva E.M., Yevstigneyeva S.S., Chernyshova M.P., Petrova L.P., Katsy E.I. Plasmid AZOBR_p1-borne fabG gene for putative 3-oxoacyl-[acyl-car rier protein] reductase is essential for proper assembly and work of the dual flagellar system in the alphaproteobacterim Azospirillum brasilense Sp245 // Can. J. Microbiol. – 2018. – Vol. 64. – P. 107-118.
  27. Golubev S.N., Muratova A.Yu., Panchenko L.V., Shchyogolev S.Yu., Turkovskaya O.V. Mycolicibacterium sp. strain PAM1, an alfalfa rhizosphere dweller, catabolizes PAHs and promotes partner-plant growth // Microbiological Research. – 2021. Vol. 253. – 126885.
  28. Guliy O.I., Evstigneeva S.S., Bunin V.D. Bacteria-based electro-optical platform for ampicillin detection in aquatic solutions // Talanta. – 2021. – Vol. 225. – 122007.
  29. Guliy O.I., Matora L.Yu., Burygin G.L., Dykman L.A., Ostudin N.A., Bunin V.D., Ignatov V.V., Ignatov O.V. Electrophysical characteristics of Azospirillum brasilense Sр245 during interaction with antibodies to various cell-surface epitopes // Analytical Biochemistry. – 2007. – V. 370. – P. 201-205.
  30. Guliy O.I., Matora L.Yu., Dykman L.A., Staroverov S.A., Burygin G.L., Bunin V.D., Burov A.M., Ignatov O.V. Electro-optical study of the exposure of Azospirillum brasilense carbohydrate epitopes // J. Immunoassay Immunochem. – 2015. – Vol. 36. – P. 379-386. DOI: 10.1080/15321819.2014.955584.
  31. Guliy O.I., Zaitsev B.D., Borodina I.A., Burygin G.L., Karavaeva O.A., Semyonov A.P. Analysis of the microbial cell-Ab binding in buffer solution by the piezoelectric resonator // Anal. Biochem. – 2018. – Vol. 554. – P. 53–60. DOI: 10.1016/j.ab.2018.05.028.
  32. Guliy О.I., Velichko N.S., Fedonenko Y.P., Bunin V.D. Use of an electro-optical sensor and phage-displayed miniantibodies for immunodetection of Herbaspirillum // Talanta. – 2019. – Vol. 202. – P. 362–368.
  33. Guliy О.I., Zaitsev B.D., Borodina I.A., Shikhabudinov А.М., Staroverov S.A., Fomin A.S., Dykman L.A. Electro-acoustic sensor for the real-time identification of the bacteriophages // Talanta. – 2018. – Vol. 178. – P. 743–750. DOI: 10.1016/j.talanta.2017.10.020.
  34. Guliy О.I., Zaitsev B.D., Borodina I.A., Shikhabudinov А.М., Teplykh A.A., Staroverov S.A., Fomin A.S. The biological acoustic sensor to record the interactions of the microbial cells with the phage antibodies in conducting suspensions // Talanta. – 2018. – Vol. 178. – P. 569–576. DOI: 10.1016/j.talanta.2017.09.076.
  35. Kamnev A.A., Antonyuk L.P., Matora L.Yu., Serebrennikova O.B., Sumaroka M.V., Colina M., Renou-Gonnord M.-F., Ignatov V.V. Spectroscopic characterization of cell membranes and their constituents of the plant-associated soil bacterium Azospirillum brasilense // J. Mol. Struct. – 1999. – V. 480-481. – P. 387-393.
  36. Kamnev A.A., Dyatlova Yu.A., Kenzhegulov O.A., Vladimirova A.A., Mamchenkova P.V., Tugarova A.V. Fourier transform infrared (FTIR) spectroscopic analyses of microbiological samples and biogenic selenium nanoparticles of microbial origin: Sample preparation effects // Molecules. – 2021. – Vol. 26, No. 4. – Article 1146.
  37. Kamnev A.A., Mamchenkova P.V., Dyatlova Yu.A., Tugarova A.V. FTIR spectroscopic studies of selenite reduction by cells of the rhizobacterium Azospirillum brasilense Sp7 and the formation of selenium nanoparticles // J. Mol. Struct. – 2017. – Vol. 1140. – P. 106-112. DOI: 10.1016/j.molstruc.2016.12.003.
  38. Kamnev A.A., Tugarova A.V., Biró B., Kovács K., Homonnay Z., Kuzmann E., Vértes A. Co2+ interaction with Azospirillum brasilense Sp7 cells: A 57Co emission Mössbauer spectroscopic study // Hyperfine Interact. – 2012. – Vol. 206, N 1-3. – P. 91-94.
  39. Kamnev A.A., Tugarova A.V., Dyatlova Yu.A., Tarantilis P.A., Grigoryeva O.P., Fainleib A.M., De Luca S. Methodological effects in Fourier transform infrared (FTIR) spectroscopy: Implications for structural analyses of biomacromolecular samples // Spectrochim. Acta Part A: Mol. Biomol. Spectrosc. – 2018. – Vol. 193. – P. 558–564. DOI: 10.1016/j.saa.2017.12.051.
  40. Kamnev A.A., Tugarova A.V., Kovács K., Biró B., Homonnay Z., Kuzmann E. Mössbauer spectroscopic study of 57Fe metabolic transformations in the rhizobacterium Azospirillum brasilense Sp245 // Hyperfine Interact. – 2014. – Vol. 226, Iss. 1-3. – P. 415-419. DOI: 10.1007/s10751-013-0929-z.
  41. Kamnev A.A., Tugarova A.V., Kovács K., Kuzmann E., Biró B., Tarantilis P.A., Homonnay Z. Emission (57Co) Mössbauer spectroscopy as a tool for probing speciation and metabolic transformations of cobalt(II) in bacterial cells // Anal. Bioanal. Chem. – 2013. – V. 405, No. 6. – P. 1921-1927.
  42. Kamnev A.A., Tugarova A.V., Tarantilis P.A., Gardiner P.H.E., Polissiou M.G. Comparing poly-3-hydroxybutyrate accumulation in Azospirillum brasilense strains Sp7 and Sp245: The effects of copper(II) // Appl. Soil Ecol. – 2012. – Vol. 61. – P. 213-216.
  43. Kargapolova K.Y., Burygin G.L., Tkachenko O.V. et al. Effectiveness of inoculation of in vitro-grown potato microplants with rhizosphere bacteria of the genus Azospirillum //Plant Cell Tiss. Organ. Cult. – 2020. – Vol. 141. – P. 351–359.
  44. Katsy E.I., Prilipov A.G. Mobile elements of an Azospirillum brasilense Sp245 85-MDa plasmid involved in replicon fusions // Plasmid. – 2009. – V. 62, № 1. – P. 22–29. – doi: 10.1016/j.plasmid.2009.02.003.
  45. Katzy E., Brodnikova N., Egorenkov D., Panasenko V., Ignatov V. Anthranilate and indole-3-acetate production in Azospirillum brasilense Sp245 mutant derivatives // Symbiosis. – 1992. – V. 13, № 1(3). – P. 147–150.
  46. Katzy E.I., Iosipenko A.D., Egorenkov D.A., Zhuravleva E.A., Panasenko V.I., Ignatov V.V. Involvement of the Azospirillum brasilense plasmid DNA in the production of indole acetic acid // FEMS Microbiol. Lett. – 1990. – V. 72, № 1. – P. 1–4.
  47. Katzy E.I., Matora L.Yu., Serebrennikova O.B., Scheludko A.V. Involvement of a 120-MDa plasmid of Azospirillum brasilense Sp245 in production of lipopolysaccharides // Plasmid. – 1998. – V. 40, № 1. – P. 73–83.
  48. Konnova S.A., Makarov O.E., Skvortsov I.M., Ignatov V.V. Isolation, fractionation and some properties of polysaccharides produced in a bound form by Azospirillum brasilense and their possible involvement in Azospirillum – wheat root interactions (Sp7, Sp245, S17, Sp107, Sp246) // FEMS Microbiol. Lett. – 1994. – V. 118, № 2. – P.93-100.
  49. Kovács K., Kamnev A.A., Pechoušek J., Tugarova A.V., Kuzmann E., Machala L., Zbořil R., Homonnay Z., Lázár K. Evidence for ferritin as dominant iron-bearing species in the rhizobacterium Azospirillum brasilense Sp7 provided by low-temperature/in-field Mössbauer spectroscopy // Anal. Bioanal. Chem. – 2016. – Vol. 406. – P. 1565-1571. DOI: 10.1007/s00216-015-9264-3.
  50. Kovtunov E.A., Petrova L.P., Shelud’ko A.V., Katsy E.I. Transposon insertion into a chromosomal copy of flhB gene is concurrent with defects in the formation of polar and lateral flagella in bacterium Azospirillum brasilense Sp245 // Russ. J. Genet. – 2013. – V. 49, № 8. – P. 881–884.
  51. Kovtunov E.A., Shelud’ko A.V., Chernyshova M.P., Petrova L.P., Katsy E.I. Mutants of bacterium Azospirillum brasilense Sp245 with Omegon insertion in mmsB or fabG genes of lipid metabolism are defective in motility and flagellation // Russ. J. Genet. – 2013. – V. 49, № 11. – P. 1107–1111.
  52. Kovtunov E.A., Shelud’ko A.V., Katsy E.I. Alterations in the primary structure of an 85-MDa plasmid affecting flagellation and motility in the bacterium Azospirillum brasilense Sp245 // Russ. J. Genet. – 2012. – V. 48, № 1. – P. 125–128.
  53. Kupryashina M.A., Ponomareva E.G., Nikitina V.E. Ability of bacteria of the genus Azospirillum to decolorize synthetic dyes // Microbiology. – 2020. – Vol. 89, No. 4. – P. 451–458.
  54. Kupryashina M.A., Vetchinkina E.P., and Nikitina V.E. Biofabrication of discrete silver and gold nanoparticles by the bacterium Azospirillum brasilense: mechanistic aspects // J. Cluster Sci. – 2017. – Vol. 28, Iss. 3. – P. 1179-1190. DOI: 10.1007/s10876-016-1111-y.
  55. Kupryashina M.A., Vetchinkina E.P., Burov A.M., Ponomareva E.G., Nikitina V.E. Biosynthesis of gold nanoparticles by Azospirillum brasilense // Microbiology. – 2013. – V. 82 – №. 6. – P. 862–869.
  56. Kupryashina M.A., Vetchinkina E.P., Nikitina V.E. Biofabrication of discrete silver and gold nanoparticles by the bacterium Azospirillum brasilense: mechanistic aspects // J. Clust. Sci. – 2017. – Vol. 28, N 3. – P. 1179-1190. DOI 10.1007/s10876-016-1111-y.
  57. Kupryashina M.A., Vetchinkina E.P., Nikitina V.E. Biosynthesis of silver nanoparticles with the participation of extracellular Mn-dependent peroxidase from Azospirillum // Appl. Biochem. Microbiol. – 2016. – Vol. 52. N 4. – С. 384-388. DOI: 10.1134/S0003683816040104.
  58. Matora L.Yu., Serebrennikova O.B., Shchyogolev S.Yu. Structurization effects of the Azospirillum lipopolysaccharides in cell suspensions // Biomacromolecules. - 2001. - V.2, №2. - P. 402-406.
  59. Muratova A.Yu., Panchenko L.V., Semina D.V., Golubev S.N., Turkovskaya O.V. New strains of oil-degrading microorganisms for treating contaminated soils and wastes // IOP Conf. Series: Earth and Environmental Science. – 2018. – Vol. 107. 012066. DOI: 10.1088/1755-1315/107/1/012066.
  60. Petrova L.P., Yevstigneeva S.S., Filip’echeva Yu.A., Shelud’ko A.V., Burygin G.L, Katsy E.I. // Plasmid gene for putative integral membrane protein affects formation of lipopolysaccharide and motility in Azospirillum brasilense Sp245 // Folia Microbiol. 2020. Vol. 65. P. 963–972.
  61. Ponomareva E.G., Kupryashina M.A., Vetchinkina E.P., Nikitina V.E. Extracellular laccase activity of bacteria of the genera Azospirillum and Niveispirillum // Biology Bulletin. – 2019. – Vol. 46, No 2. – P. 161-167.
  62. Ponomareva E.G. , Kupryashina M.A. , Shelud’ko A.V., Petrova L.P., Vetchinkina E.P. Katsy E.I., Nikitina V.E. Phenol oxidase activity of Azospirillum brasilense Sp245 mutants with modified motility and Azospirillum brasilense Sp7 phase variants with different plasmid composition // Microbiology. – 2018. – Vol. 87, N. 2. – P. 222-228. DOI: 10.1134/S 002626171 8020091.
  63. Pozdnyakova N.N, Dubrovskaya E.V., Grinev V.S., Turkovskaya O.V. Prospects for the Use of Xylotrophic Fungi Pleurotus ostreatus Florida and Schizophyllum commune for Mycoremediation of Soils Contaminated with Oil Hydrocarbons and Surfactants // Biotechnology. – 2021. – Vol. 37, No. 5. – P. 108-116.
  64. Schelud’ko A.V., Makrushin K.V., Tugarova A.V., Krestinenko V.A., Panasenko V.I., Antonyuk L.P., Katsy E.I. Changes in motility of the rhizobacterium Azospirillum brasilense in the presence of plant lectins // Microbiol. Res. – 2009. – V. 164, № 2. – P. 149–156. – doi: 10.1016/j.micres.2006.11.008.
  65. Schelud’ko A.V., Makrushin K.V., Tugarova A.V., Krestinenko V.A., Panasenko V.I., Antonyuk L.P., Katsy E.I. Changes in motility of the rhizobacterium Azospirillum brasilense in the presence of plant lectins // Microbiol. Res. – 2009. – V. 164, № 2. – P. 149–156. – doi: 10.1016/j.micres.2006.11.008.
  66. Scheludko A.V., Katsy E.I., Ostudin N.A., Gringaus O.K., Panasenko V.I. Novel classes of Azospirillum brasilense mutants with defects in the assembly and functioning of polar and lateral flagella (статья на англ. яз.) // Мол. генет. микробиол. вирусол. – 1998. – № 4. – С. 33–37.
  67. Shelud’ko A.V., Burygin G.L., Filip’echeva Yu.A., Belyakov A.E., Shirokov A.A., Burov A.M., Katsy E.I., Shchegolev S.Yu., Matora L.Yu. Serological relationships of azospirilla revealed by their motility patterns in the presence of antibodies to lipopolysaccharides // Microbiology. – 2014. – V. 83, No. 1–2. – P. 102–109.
  68. Shelud’ko A.V., Filip’echeva Y.A., Telesheva E.M., Yevstigneeva S.S., Petrova L.P., Katsy E.I. Polar flagellum of the alphaproteobacterium Azospirillum brasilense Sp245 plays a role in biofilm biomass accumulation and in biofilm maintenance under stationary and dynamic conditions // World J. Microbiol. Biotechnol. – 2019. – Vol. 35, No 2. – P. 19.
  69. Shelud’ko A.V., Mokeev D.I., Evstigneeva S.S., Filip’echeva Yu.A., Burov A.M., Petrova L.P., Ponomareva E.G., Katsy E.I. Cell ultrastructure in biofilms of Azospirillum brasilense // Microbiology. 2020. Vol. 89, No 1. P. 50–63.
  70. Shelud’ko A.V., Tugarova A.V., Il’chukova A.V., Varshalomidze O.E., Antonyuk L.P., El’-Registan G.I., Katsy E.I. Negative effect of alkylresorcinols on motility of rhizobacteria Azospirillum brasilense // Microbiology. – 2013. – V. 82, № 4. – P. 434–438.
  71. Shelud’ko A.V., Varshalomidze O.E., Petrova L.P., Katsy E.I. Effect of genomic rearrangement on heavy metal tolerance in the plant-growth-promoting rhizobacterium Azospirillum brasilense Sp245 // Folia Microbiol. – 2012. – V. 57, № 1. – P. 5–10.
  72. Sigida E., Shashkov A., Shelud’ko A., Zdorovenko E., Toukach P.V., Konnova S., Fedonenko Yu., Knirel Yu. Structural studies of O-specific polysaccharide(s) and biological activity toward plants of the lipopolysaccharide from Azospirillum brasilense SR8 // Int. J. Biol. Macromol. – 2019. – Vol. 126. – P. 246–253.
  73. Sigida E.N., Fedonenko Y.P., Shashkov A.S., Arbatsky N.P., Zdorovenko E.L., Konnova S.A., Ignatov V.V., Knirel Y.A. Elucidation of a masked repeating structure of the O-specific polysaccharide of the halotolerant soil bacteria Azospirillum halopraeferens Au4 // Beilstein J. Org. Chem. – 2016. – Vol. 12. – P. 636-642. DOI: 10.3762/bjoc.12.62.
  74. Sigida E.N., Fedonenko Y.P., Shashkov A.S., Grinev V.S., Zdorovenko E.L., Konnova S.A., Ignatov V.V., Knirel Y.A. Structural studies of the polysaccharides from the lipopolysaccharides of Azospirillum brasilense Sp246 and SpBr14 // Carbohyd. Res. – 2014. – Vol. 398. – P. 40-44. DOI: 10.1016/j.carres.2014.05.008.
  75. Sigida E.N., Fedonenko Y.P., Shashkov A.S., Zdorovenko E.L., Ignatov V.V., Knirel Y.A. Structural studies of the O-specific polysaccharide from detergent degrading bacteria Pseudomonas putida TSh-18 // Carbohyd. Res. – 2017. – Vol. 448. – P. 1-5. DOI: 10.1016/j.carres.2017.05.013.
  76. Sigida E.N., Fedonenko Y.P., Shashkov A.S., Zdorovenko E.L., Konnova S.A., Knirel Y.A. Structure of the O-specific polysaccharide of Azospirillum doebereinerae type strain GSF71T // Carbohydr. Res. 2019. V. 478. P. 54-57.
  77. Sigida E.N., Fedonenko Yu.P., Shashkov A.S., Konnova S.A., Ignatov V.V. Structure of the O-specific polysaccharide of the type strain from Azospirillum fermentarium // Carbohydr. Res. – 2018. – Vol. 465. – P. 40–43. DOI: 10.1016/j.carres.2018.06.003.
  78. Sigida E.N., Fedonenko Yu.P., Shashkov A.S., Zdorovenko E.L., Konnova S.A., Ignatov V.V., Knirel Y.A. Structural studies of the O-specific polysaccharide(s) from the lipopolysaccharide of Azospirillum brasilense type strain Sp7 // Carbohydr. Res. – 2013. – V. 380. – P. 76-80.
  79. Sigida E.N., Fedonenko Yu.P., Zdorovenko E.L., Konnova S.A., Shashkov A.S., Ignatov V.V., Knirel Y.A. Structure of repeating units of a polysaccharide(s) from the lipopolysaccharide of Azospirillum brasilense SR80 // Carbohydr. Res. – 2013. – V. 371. – P. 40-44.
  80. Sigida E.N., Kargapolova K.Y., Shashkov A.S., Zdorovenko E.L., Ponomaryova T.S., Meshcheryakova A.A., Tkachenko O.V., Burygin G.L., Knirel Y.A. Structure, gene cluster of the O antigen and biological activity of the lipopolysaccharide from the rhizospheric bacterium Ochrobactrum cytisi IPA7.2 // Int. J. Biol. Macromol. 2020. Vol. 154. P. 1375-1381.
  81. Smol’kina O.N., Shishonkova N.S., Fedonenko Yu.P., Zdorovenko E.L., Konnova S.A., Ignatov V.V. An improved rapid method for the preparation of D-rhamnose // Carbohydr. Res. – 2012. – Vol. 347. – P. 161-163.
  82. Stepanova L.V., Schelud’ko A.V., Katsy E.I., Ponomareva E.G., Nikitina V.E. The role of lectin-carbohydrate biospecific interactions between medicinal basidiomycetes mushroom Grifola frondosa (Dicks.: Fr.) S.F. Gray and Azospirillum brasilense during their co-cultivation // Int. J. Med. Mushrooms. – 2008. – V. 10, № 1. – P. 65–72. – doi: 10.1615/IntJMedMushr.v10.i1.80. (Изд-во: Begell House, Inc.).
  83. Tkachenko O.V., Evseeva N.V., Boikova N.V., Matora L.Yu., Burygin G.L., Lobachev Yu.V., Shchyogolev S.Yu. Improved potato microclonal reproduction with the plant-growth promoting rhizobacteria Azospirillum // Agron. Sustain. Dev. – 2015. – Vol. 35, Iss. 3. – P. 1167-1174. DOI: 10.1007/s13593-015-0304-3.
  84. Tsivileva O.M., Perfileva A.I., Ivanova A.A., Pozdnyakov A.S., Prozorova G.F. The effect of selenium- or metal-nanoparticles incorporated nanocomposites of vinyl triazole based polymers on fungal growth and bactericidal properties // Journal of Polymers and the Environment. – 2021. – Vol. 29, No. 4. – P. 1287–1297.
  85. Tsivileva O.M., Shaternikov A.N., Nikitina V.E. Bacteria of the Azospirillum genus for the optimization of the artificial culture of xylotrophic mushrooms // Biotekhnologiya – 2020. – Vol. 36, No. 2. – P. 16-25.
  86. Tugarova A.V., Burov A.M., Burashnikova M.M., Kamnev A.A. Gold(III) Reduction by the Rhizobacterium Azospirillum brasilense with the Formation of Gold Nanoparticles // Microb Ecol. – 2014. – Vol. 67. – P. 155-160. DOI: 10.1007/s00248-013-0329-6.
  87. Tugarova A.V., Dyatlova Yu.A., Kenzhegulov O.A., Kamnev A.A. Poly-3-hydroxybutyrate synthesis by different Azospirillum brasilense strains under varying nitrogen deficiency: a comparative in-situ FTIR spectroscopic analysis // Spectrochim. Acta Part A: Mol. Biomol. Spectrosc. – 2021. – Vol. 252. - 119458.
  88. Tugarova A.V., Mamchenkova P.V., Dyatlova Yu.A., Kamnev A.A. FTIR and Raman spectroscopic studies of selenium nanoparticles synthesised by the bacterium Azospirillum thiophilum // Spectrochim. Acta Part A: Mol. Biomol. Spectrosc. – 2018. – Vol. 192. – P. 458–463. DOI: 10.1016/j.saa.2017.11.050.
  89. Tugarova A.V., Mamchenkova P.V., Khanadeev V.A., Kamnev A.A. Selenite reduction by the rhizobacterium Azospirillum brasilense, synthesis of extracellular selenium nanoparticles and their characterisation // New Biotechnol. 2020. Vol. 58. P. 17–24.
  90. Tugarova A.V., Shelud’ko A.V., Dyatlova Yu.A., Filip’echeva Yu.A., Kamnev A.A. FTIR spectroscopic study of biofilms formed by the rhizobacterium Azospirillum brasilense Sp245 and its mutant Azospirillum brasilense Sp245.1610 // J. Mol. Struct. – 2017. – Vol. 1140. – P. 142-147. DOI: 10.1016/j.molstruc.2016.12.063.
  91. Tugarova A.V., Vetchinkina E.P., Loshchinina E.A., Burov A.M., Nikitina V.E., Kamnev A.A. Reduction of Selenite by Azospirillum brasilense with the Formation of Selenium Nanoparticles // Microb Ecol. – 2014. – Vol. 68. – P. 495-503. DOI: 10.1007/s00248-014-0429-y.
  92. Turkovskaya O. and Muratova A. Plant–bacterial degradation of polyaromatic hydrocarbons in the rhizosphere // Trends in Biotechnology. – 2019. – Vol. 37. – P. 926-930.
  93. Turkovskaya O.V., Golubev S.N. The Collection of Rhizosphere Microorganisms: its importance for the study of associative plant-bacterium interactions // Vavilov J. Gen. Breed. – 2020. – Vol. 24, No. 3. – P. 315-324.
  94. Vanzha E., Pylaev T., Khanadeev V, Konnova S., Fedorova V., Khlebtsov N. Gold nanoparticle-assisted polymerase chain reaction: effects of surface ligands, nanoparticle shape and material // RSC Adv. – 2016. – Vol. 6. – P. 110146–110154. DOI: 10.1039/c6ra20472d.
  95. Varshalomidze O.E., Petrova L.P., Shelud’ko A.V., Katsy E.I. Spontaneous super-swarming derivatives of Azospirillum brasilense Sp245 have different DNA profiles and behavior in the presence of various nitrogen sources // Indian J. Microbiol. – 2012. – V. 52, № 4. – P. 689–694.
  96. Velichko N., Grinev V., Fedonenko Y. Characterization of biopolymers produced by planktonic and biofilm cells of Herbaspirillum lusitanum P6-12 // J. Appl. Microbiol. 2020. Vol. 129. P. 1349-1363.
  97. Velichko N.S., Kokoulin M.S., Sigida E.N., Chesnokova P.D., Komissarov A.S., Kovtunov E.A., Fedonenko Y.P. Structural and genetic characterization of the Herbaspirillum frisingense GSF30 colitose-containing O-antigen // Int. J. Biol. Macromol. 2020. Vol. 161. P. 891-897.
  98. Vetchinkina E.P., Loshchinina E.A., Kupryashina M.A., Burov A.M., Nikitina V.E. Shape and size diversity of gold, silver, selenium, and silica nanoparticles prepared by green synthesis using fungi and bacteria // Ind. Eng. Chem. Res. – 2019. – Vol.58, No. 37. – P. 17207-17218.
  99. Yegorenkova I.V., Konnova S.A., Sachuk V.N., Ignatov V.V. Azospirillum brasilense colonisation of wheat roots and the role of lectin-carbohydrate interactions in bacterial adsorption and root-hair deformation (SR75, SR80, Sp245) // Plant Soil. – 2001. – Vol. 231, № 2. – P. 275-282.
  100. Yegorenkova I.V., Tregubova K.V., Ignatov V.V. Paenibacillus polymyxa rhizobacteria and their synthesized exoglycans in interaction with wheat roots: colonization and root hair deformation // Curr. Microbiol. – 2013. – V. 66. – P. 481-486.
  101. Yegorenkova I.V., Tregubova K.V., Krasov A.I., Evseeva N.V., Matora L.Yu. Influence of Paenibacillus polymyxa rhizobacteria and their exopolysaccharides on physiological and morphological variables of wheat seedlings // J. Microbiol. - 2021. - Vol. 59. - P. 729-735.
  102. Yegorenkova I.V., Tregubova K.V., Matora L.Yu., Burygin G.L., Ignatov V.V. Use of ELISA with antiexopolysaccharide antibodies to evaluate wheat-root colonization by the rhizobacterium Paenibacillus polymyxa (1460, 1465, 92) // Curr. Microbiol. – 2010. – Vol. 61, No. 5. – P. 376-380.
  103. Yegorenkova I.V., Tregubova K.V., Matora L.Yu., Burygin G.L., Ignatov V.V. Biofilm formation by Paenibacillus polymyxa strains differing in the prodaction and rheological properties of their exopolysaccharides (1460, 1465, 92)// Curr. Microbiol. – 2011. – Vol. 62, No. 5. – P. 1554-1559.
  104. Yegorenkova I.V., Tregubova K.V., Schelud’ko A.V. Motility in liquid and semisolid media of Paenibacillus polymyxa strains differing in exopolysaccharide properties // Symbiosis. – 2018. – Vol. 74. – P. 31–42. DOI: 10.1007/s13199-017-0492-5.
  105. Аленькина С.А., Жаркова В.Р., Никитина В.Е. Изучение стабилизирующего влияния лектинов азоспирилл на активность β-глюкозидазы // Прикл. биохимия и микробиология. 2007. Т. 43, № 6. С. 655 – 658.
  106. Аленькина С.А., Матора Л.Ю., Никитина В.Е. Оценка влияния лектинов азоспирилл на уровень цАМф в растительной клетке // Микробиология. 2010. Т. 79. № 6. С. 856-858.
  107. Аленькина С.А., Наконечная О.И., Матора Л.Ю., Никитина В.Е. Изменение содержания ц-АМФ и перекиси водорода в растительной клетке при воздействии лектинов азоспирилл // Агрохимия. 2011. № 8. С. 68-72.
  108. Аленькина С.А., Никитина В.Е. Влияние лектинов азоспирилл на активность протеолитических ферментов и их ингибиторов в корнях проростков пшеницы // Микробиология. – 2015. – Т. 84, № 5. – С. 553-560. DOI: 10.7868/S002636561505002X. Alen’kina S.A., Nikitina V.E. Effect of azospirillum lectins on the activity of proteolytic enzymes and their inhibitors in wheat seedling roots // Microbiology. – 2015. – Vol. 84, N 5. – С. 630-635. DOI: 10.1134/S0026261715050021.
  109. Аленькина С.А., Никитина В.Е. Влияние лектинов азоспирилл на содержание активных форм кислорода в корнях проростков пшеницы при тепловом и солевом стрессах // Агрохимия. – 2018. – № 11. – С. 78-86. DOI: 10.1134/S0002188118110030.
  110. Аленькина С.А., Никитина В.Е. Влияние лектинов эндофитного и эпифитного штаммов азоспирилл на активность пектолитических ферментов растительной клетки // Изв. Уфим. науч. центра РАН. – 2017. – № 1. – C. 49-53.
  111. Аленькина С.А., Никитина В.Е. Изменение содержания оксида азота в корнях проростков пшеницы под влиянием лектинов азоспирилл // Журнал стресс-физиологии и биохимии. 2010. Т.6. № 4. С. 127-135.
  112. Аленькина С.А., Никитина В.Е. Изменение содержания оксида азота в корнях проростков пшеницы под влиянием лектинов азоспирилл // Доклады РАСХН. 2011. № 6. С. 12-14.
  113. Аленькина С.А., Никитина В.Е. Регуляция активности пероксидазы и оксалатоксидазы корней пшеницы под влиянием лектинов азоспирилл // Известия РАН. Серия биологическая. 2010. № 1. С. 1-4.
  114. Аленькина С.А., Никитина В.Е., Борисова-Головко М.В. Изучение взаимосвязи лектиновой, α-,β-глюкозидазных, β-галактозидазной активностей азоспирилл // Микробиология. 2001. Т. 70, N.5. С. 647-650.
  115. Аленькина С.А., Паюсова О.А., Никитина В.Е. Сравнительное изучение влияния лектинов Azospirillum brasilense Sp7 и его мутанта на активность некоторых ферментов растительной клетки // Микробиология. 2004. Т.73, № 6. С. 849-850.
  116. Аленькина С.А., Петрова Л.П., Никитина В.Е. Получение и характеристика мутанта Azospirillum brasilense Sp7 по лектиновой активности // Микробиология. 1998. Т. 67, N6. С. 782-787.
  117. Аленькина С.А., Трутнева К.А., Никитина В.Е. Изменение содержания салициловой кислоты, активности фенилаланин-аммиаклиазы и каталазы в корнях проростков пшеницы при воздействии лектинов азоспирилл // Известия РАН. Серия биологическая – 2013. – № 6. – С. 760-764.
  118. Богатырев В.А., Дыкман Л.А., Матора Л.Ю., Шварцбурд Б.А. Твердофазный иммуноанализ с использованием коллоидного золота в серотипировании азоспирилл // Микробиология. – 1991. – Т.60. № 3. – С. 524-528.
  119. Бойко А.С., Смолькина О.Н., Федоненко Ю.П., Здоровенко Э.Л., Качала В.В., Коннова С.А., Игнатов В.В. Особенности структуры О-полисахаридов азоспирилл серогруппы I (A. brasilense Sp245, Sp107, SR75, SR15, S27, A. lipoferum RG20a, A. irakense KBC1) // Микробиология. – 2010. – Т. 79, № 2. – С. 219-227.
  120. Бойкова Н.В., Ткаченко О.В., Евсеева Н.В., Матора Л.Ю., Бурыгин Г.Л., Щеголев С.Ю. Создание ассоциации in vitro картофеля с бактериями рода Azospirillum // Аграрный научный журнал. – 2015. – № 7. – С. 3-7.
  121. Бродникова Н.А., Кацы Е.И., Егоренков Д.А., Панасенко В.И. Мутанты ассоциированных со злаками бактерий Azospirillum brasilense Sp245 по продукции антраниловой и индолил-3-уксусной кислот // Мол. генет. микробиол. вирусол. – 1992. – № 9–10. – С. 3–5.
  122. Бурыгин Г.Л., Каргаполова К.Ю., Евсеева Н.В., Ткаченко О.В. Особенности инокуляции растений ризосферными бактериями как фактор повышения эффективност и микроклональ ного размножения картофеля // Вестник биотехнол огии. – 2018. – Т. 14, № 2. – С. 12-16.
  123. Бурыгин Г.Л., Матора Л.Ю., Щеголев С.Ю. Изменение антигенных свойств липополисахаридов Azospirillum brasilense при внесении в среду культивирования трис(гидроксиметил)аминометана // Прикл. биохим. и микробиол. - 2002. – Т.38, №3. – С. 292-294.
  124. Бурыгин Г.Л., Сигида Е.Н., Федоненко Ю.П., Хлебцов Б.Н., Щеголев С.Ю. Применение и развитие метода динамического рассеяния света для исследования надмолекулярных структур в водных растворах бактериальных липополисахаридов // Биофизика. – 2016. – Т. 61, вып. 4. – С. 647-659. DOI: 10.1134/S0006350916040059.
  125. Бурыгин Г.Л., Широков А.А., Шелудько А.В., Кацы Е.И., Щеголев С.Ю., Матора Л.Ю. Выявление чехла на поверхности полярного жгутика Azospirillum brasilense // Микробиология. – 2007. – Т. 76, № 6. – С. 822–829. Burygin G.L., Shirokov A.A., Shelud’ko A.V., Katsy E.I., Shchygolev S.Yu., Matora L.Yu. Detection of a sheath on Azospirillum brasilense polar flagellum // Microbiology. – 2007. – V. 76, № 6. – P. 728–734.
  126. Величко Н.С., Суркина А.К., Федоненко Ю.П., Здоровенко Э.Л., Коннова С.А. Особенности строения и биологические свойства липополисахарида Herbaspirillum seropedicae Z78 // Микробиология. – 2018. – Т. 87, № 5. – С. 511–518. DOI: 10.1134/S002636561805018X.
  127. Ветчинкина Е.П., Пономарёва Е.Г., Гоголева Ю.В., Никитина В.Е. Тирозиназы подвижных штаммов бактерий рода Azospirillum // Микробиология. – 2013. – Т. 82, № 2. – С. 157-161.
  128. Голубев С.Н., Дубровская Е.В., Турковская О.В. Коллекция ризосферных микроорганизмов ИБФРМ РАН: ревизия штаммов бактерий рода Azospirillum на основе анализа нуклеотидных последовательностей гена 16S рРНК // Изв. Сарат. ун-та. Нов. сер. Сер. Химия. Биология. Экология. – 2018. – Т. 18, вып. 1. – С. 52-59. DOI: 10.18500/1 816-9775-2 018-18-1-5 2-59.
  129. Гулий О.И., Бунин В.Д., О’Нейл Д., Ивницкий Д., Матора Л.Ю., Игнатов О.В. Исследование электрофизических свойств клеток Azospirillum brasilense Sp7 при их взаимодействии с поликлональными антителами // ЖМЭИ. – 2007, № 5. – С. 80-82.
  130. Евсеева Н.В., Матора Л.Ю., Бурыгин Г.Л., Щеголев С.Ю. Физиолого-биохимические изменения в проростках пшеницы при инокуляции бактериями рода Azospirillum // Физиол. и биохим. культ. раст. – 2011. – Т. 43. – С. 171–178.
  131. Евстигнеева С.С., Сигида Е.Н., Федоненко Ю.П., Коннова С.А., Игнатов В.В. Структурные особенности капсульных и о-полисахаридов бактерий Azospirillum brasilense Sp245 при изменении условий культивирования // Микробиология. – 2016. – Т. 85, № 6. – С. 643-651. DOI: 10.7868/S0026365616060094. Yevstigneyeva S.S., Sigida E.N., Fedonenko Y.P., Ignatov V.V., Konnova S.A. Structural properties of capsular and O-specific polysaccharides of Azospirillum brasilense Sp245 under varying cultivation conditions // Microbiology. – 2016. – Vol. 85, N 6. – С. 664-671. DOI: 10.1134/S0026261716060096.
  132. Егоренкова И.В., Коннова С.А., Скворцов И.М., Игнатов В.В. Исследование начальных этапов взаимодействия бактерий Azospirillum brasilense с корнями проростков пшеницы: адсорбции, деформации корневых волосков (Sp7, SR75, SR80) // Микробиология. – 2000. – Т. 69, № 1. – С. 120-126.
  133. Егоренкова И.В., Коннова С.А., Федоненко Ю.П., Дыкман Л.А., Игнатов В.В. Роль полисахаридсодержащих компонентов капсулы Azospirillum brasilense в адсорбции бактерий на корнях проростков пшеницы (Sp245, SR80) // Микробиология. – 2001. – Т. 70, № 1. – С. 45-50.
  134. Жемеричкин Д.А., Макаров О.Е., Скворцов И.М., Игнатов В.В. Выделение, фракционирование и моносахаридный состав О-специфических полисахаридов S-формы Azospirillum brasilense (A. brasilense Sp7) // Микробиология. – 1989. – Т. 58, № 2. – С. 236-239.
  135. Камнева А.Б., Кацы Е.И., Борисов И.В., Шелудько А.В., Панасенко В.И. Комплементационный анализ мутантов ассоциативных бактерий Azospirillum brasilense Sp245 и S27, дефектных по подвижности и жгутикованию // Генетика. – 2001. – Т. 37, № 2. – С. 190–196. Kamneva A.B., Katzy E.I., Borisov I.V., Scheludko A.V., Panasenko V.I. Complementation analysis of associative bacteria Azospirillum brasilense Sp245 and S27 defective for motility and flagellation // Russ. J. Genet. – 2001. – V. 37, № 2. – P. 135-140. – doi: 10.1023/A:1009033720368.
  136. Камнева А.Б., Кацы Е.И., Борисов И.В., Шелудько А.В., Панасенко В.И. Комплементационный анализ мутантов ассоциативных бактерий Azospirillum brasilense Sp245 и S27, дефектных по подвижности и жгутикованию // Генетика. – 2001. – Т. 37, № 2. – С. 190–196. Kamneva A.B., Katzy E.I., Borisov I.V., Scheludko A.V., Panasenko V.I. Complementation analysis of associative bacteria Azospirillum brasilense Sp245 and S27 defective for motility and flagellation // Russ. J. Genet. – 2001. – V. 37, № 2. – P. 135-140. – doi: 10.1023/A:1009033720368.
  137. Каневский М.В., Коннова С.А., Бойко А.С., Федоненко Ю.П., Сигида Е.Н., Игнатов В.В. Влияние флавоноидов на состав гликополимеров поверхности Azospirillum lipoferum Sp59b // Микробиология. – 2014. – Т. 83, № 2. – С. 143-151. DOI: 10.7868/S0026365614020116. Kanevskiy M.V., Konnova S.A., Ignatov V.V., Boyko A.S., Fedonenko Y.P., Sigida E.N. Effect of flavonoids on the composition of surface glycopolymers of Azospirillum lipoferum Sp59b // Microbiology. – 2014. – Vol. 83, N 1-2. – С. 15-22. DOI: 10.1134/S0026261714020106.
  138. Кацы Е.И. Плазмида р85 Azospirillum brasilense Sp245: Изучение круга возможных хозяев и несовместимости с плазмидами Azospirillum brasilense Sp7 // Мол. генет. микробиол. вирусол. – 1992. – № 9–10. – С. 8–11.
  139. Кацы Е.И. Плазмида р85 Azospirillum brasilense Sp245: Изучение круга возможных хозяев и несовместимости с плазмидами Azospirillum brasilense Sp7 // Мол. генет. микробиол. вирусол. – 1992. – № 9–10. – С. 8–11.
  140. Кацы Е.И. Поиск конъюгативных плазмид у ассоциированных с растениями бактерий Azospirillum brasilense и Azospirillum lipoferum // Мол. генет. микробиол. вирусол. – 2002. – № 3. – C. 40–41.
  141. Кацы Е.И. Характеристика генов, выявленных в ДНК 120-МДа плазмиды у мутанта бактерий Azospirillum brasilense Sp245, дефектного по продукции полярного жгутика и роению // Генетика. – 2002. – Т. 38, № 1. – C. 22–32. Katzy E.I. Characterization of genes identified in the 120-MDa plasmid of an Azospirillum brasilense Sp245 mutant defective in polar flagellation and swarming // Russ. J. Genet. – 2002. – V. 38, № 1. – P. 15–24. – doi:10.1023/A:1013703509110.
  142. Кацы Е.И., Борисов И.В., Машкина А.Б., Панасенко В.И. Влияние плазмидного состава на реакции хемотаксиса у ассоциированных со злаками бактерий Azospirillum brasilense Sp245 // Мол. генет. микробиол. вирусол. – 1994. – № 2. – С. 29–32.
  143. Кацы Е.И., Борисов И.В., Петрова Л.П., Матора Л.Ю. Использование фрагментов 85- и 120-МДа плазмид Azospirillum brasilense Sp245 для изучения плазмидной перестройки у этих бактерий и для поиска гомологичных последовательностей в плазмидах Azospirillum brasilense Sp7 // Генетика. – 2002. – Т. 38, № 2. – C. 182–189. Katsy E.I., Borisov I.V., Petrova L.P., Matora L.Yu. The use of fragments of the 85- and 120-MDa plasmids of Azospirillum brasilense Sp245 to study the plasmid rearrangement in this bacterium and to search for homologous sequences in plasmids of Azospirillum brasilense Sp7 // Russ. J. Genet. – 2002. – V. 38, № 2. – P. 124–131. – doi: 10.1023/A:1014373725254.
  144. Кацы Е.И., Борисов И.В., Петрова Л.П., Матора Л.Ю. Использование фрагментов 85- и 120-МДа плазмид Azospirillum brasilense Sp245 для изучения плазмидной перестройки у этих бактерий и для поиска гомологичных последовательностей в плазмидах Azospirillum brasilense Sp7 // Генетика. – 2002. – Т. 38, № 2. – C. 182–189. Katsy E.I., Borisov I.V., Petrova L.P., Matora L.Yu. The use of fragments of the 85- and 120-MDa plasmids of Azospirillum brasilense Sp245 to study the plasmid rearrangement in this bacterium and to search for homologous sequences in plasmids of Azospirillum brasilense Sp7 // Russ. J. Genet. – 2002. – V. 38, № 2. – P. 124–131. – doi: 10.1023/A:1014373725254.
  145. Кацы Е.И., Борисов И.В., Шелудько А.В. Влияние интеграции вектора pJFF350 в 85-МДа плазмиду Azospirillum brasilense Sp245 на жгутикование и подвижность бактерий // Генетика. – 2001. – Т. 37, № 2. – С. 183–189. Katzy E.I., Borisov I.V., Scheludko A.V. Effect of the integration of vector pJFF350 into plasmid 85-MDa of Azospirillum brasilense Sp245 on bacterial flagellation and motility // Russ. J. Genet. – 2001. – V. 37, № 2. – P. 129–134. – doi 10.1023/A: 1009081603530.
  146. Кацы Е.И., Журавлева Е.А., Панасенко В.И. Транспозоновый мутагенез, элиминация и мобилизация плазмид азотфиксирующей бактерии Azospirillum brasilense Sp245 // Мол. генет. микробиол. вирусол. – 1990. – № 2. – С. 29–32.
  147. Кацы Е.И., Камнева А.Б., Борисов И.В. Одиночные инсерции омегона в ДНК Azospirillum brasilense могут приводить к дефектам в нескольких видах бактериальной подвижности // Мол. генет. микробиол. вирусол. – 2004. – № 3. – С. 40–41. Katsy E.I., Kamneva A.B., Borisov I.V. Single insertions of omegon into Azospirillum brasilense DNA result in defects in the bacterial mobility of several types // Mol. Genet. Mikrobiol. Virusol. – 2004. – № 3. – P. 40–41.
  148. Кацы Е.И., Петрова Л.П. Геномные перестройки у Azospirillum brasilense Sp7 с участием плазмиды pRhico и профага ФAb-Cd // Генетика. – 2015. – Т. 51, № 12. – С. 1351-1358. DOI: 10.7868/S0016675815110090. Katsy E.I., Petrova L.P. Genome Rearrangements in Azospirillum brasilense Sp7 with the Involvement of the Plasmid pRhico and the Prophage ΦAb-Cd // Russ. J. Genet. – 2015. – Vol. 51, N 12. – С. 1165-1171. DOI: 10.1134/S1022795415110095.
  149. Кацы Е.И., Петрова Л.П., Кулибякина О.В., Прилипов А.Г. Анализ плазмидных локусов Azospirillum brasilense, кодирующих ферменты синтеза (липо)полисахаридов // Микробиология. – 2010. – Т. 79, № 2. – С. 239–245. Katsy E.I., Petrova L.P., Kulibyakina O.V., Prilipov A.G. Analysis of Azospirillum brasilense plasmid loci coding for (lipo)polysaccharides synthesis enzymes // Microbiology. – 2010. V. 79, № 2. – P. 216–222. – doi: 10.1134/S002626171002013X
  150. Кацы Е.И., Шелудько А.В. Использование транспозонового TnphoA мутагенеза для получения мутантов Azospirillum brasilense по подвижности и жгутикованию // Мол. генет. микробиол. вирусол. – 2000. – № 4. – С. 17–20.
  151. Кацы Е.И., Шелудько А.В. Картирование локуса fla в плазмиде с молекулярной массой 120 МДа у бактерий Azospirillum brasilense Sp245 // Генетика. – 1999. – Т. 35, № 10. – С. 1367–1372. Katzy E.I., Shelud’ko A.V. Mapping of the fla locus in a plasmid with molecular weight of 120 MDa in Azospirillum brasilense Sp245 bacteria // Russ. J. Genet. – 1999. – V. 35, № 10. – P. 1177–1182.
  152. Коврижников А.В., Пылаев Т.Е., Захаревич А.М., Коннова С.А., Купряшина М.А. Получениe жизнеспособных клеток Azospirillum brasilense SR80, инкапсулированных в альгинатный гидрогель // Известия Саратовского университета. Новая серия. Серия: Химия. Биология. Экология. – 2021. – Т. 21, вып. 3. – С. 298–303.
  153. Ковтунов Е.А., Шелудько А.В., Кацы Е.И. Изменения в первичной структуре 85-МДа плазмиды, влияющие на жгутикование и подвижность бактерии Azospirillum brasilense Sp245 // Генетика. – 2012. – Т. 48, № 1. – С. 138–141. Kovtunov E.A., Shelud’ko A.V., Katsy E.I. Alterations in the primary structure of an 85-MDa plasmid affecting flagellation and motility in the bacterium Azospirillum brasilense Sp245 // Russ. J. Genet. – 2012. – V. 48, № 1. – P. 125–128. – doi: 10.1134/S1022795412
  154. Козулин В.В., Микеров А.Н., Макаров О.Е., Скворцов И.М., Игнатов В.В. Полисахаридные комплексы, липополисахариды и О-специфические полисахариды бактерий Xanthomonas campestris pv. campestris 8183а // Микробиология. – 1997. – Т. 66, № 2. – С. 192-197.
  155. Коннова О.Н., Бойко А.С., Бурыгин Г.Л., Федоненко Ю.П., Матора Л.Ю., Коннова С.А., Игнатов В.В. Химические и серологические исследования бактерий рода Azospirillum (A. brasilense Sp7, Cd, Sp245, S17. SR75, SR15, A. lipoferum Sp59b, RG20a, A. irakense KBC1) // Микробиология. – 2008. Т. 77, № 3. – С. 350-357.
  156. Коннова О.Н., Бурыгин Г.Л., Федоненко Ю.П., Матора Л.Ю., Панкин К.Е.,Коннова С.А., Игнатов В.В. Химический состав и иммунохимическая характеристика липополисахарида азотфиксирующих ризобактерий Azospirillum brasilense Cd // Микробиология. – 2006. – 75, № 3. – С. 383-388.
  157. Коннова С.А., Бабердина И.В., Макаров О.Е., Скворцов И.М., Игнатов В.В. полисахарид-липидный комплекс поверхности клеток и культуральной жидкости S-варианта Azospirillum brasilense Sp7: деградация комплекса, фракционирование и моносахаридный состав полисахаридов // Микробиол. Журн. – 1990. – Т. 52, № 4. – С. 40-46.
  158. Коннова С.А., Макаров О.Е., Скворцов И.М., Игнатов В.В. Экзополисахариды бактерий Azospirillum brasilense Sp245 и Sp107 // Микробиол. Журн. – 1992. – Т. 54, № 2. – С. 31-42.
  159. Коннова С.А., Рогова Т.А., Макаров О.Е., Скворцов И.М., Игнатов В.В. Исследование полисахаридсодержащих комплексов и полисахаридов с бактерий Azospirillum brasilense Cd // Микробиология. – 1999. – Т. 68, № 1. – C.164-171.
  160. Коннова С.А., Скворцов И.М., Макаров О.Е., Игнатов В.В. Свойства полисахаридных комплексов, продуцируемых Azospirillum brasilense, и получаемых из них полисахаридов// Микробиология. – 1994. – Т. 63, № 6. – С. 1020-1030.
  161. Коннова С.А., Скворцов И.М., Макаров О.Е., Прохорова Р.Н., Рогова Т.А., Игнатов В.В. Полисахаридные комплексы, выделяемые Azospirillum brasilense, и их возможная роль во взаимодействии бактерий с корнями пшеницы (Sp7, Sp245, S17, Sp107, Sp246, SR8, SR55, SR75, SR80) // Микробиология. – 1995. – Т. 64, № 6. – С. 762-768.
  162. Красов А.И., Попова И. А., Филипьечева Ю.А., Бурыгин Г.Л., Матора Л.Ю. Применение иммуноферментного анализа для выявления азотфиксирующих бактерий рода Azospirillum в почвенных суспензиях // Микробиология. – 2009. – Т. 78, № 5. – С. 662-666.
  163. Крицкая Т.А., Евсеева Н.В., Бурыгин Г.Л., Кашин А.С., Щеголев С.Ю. Использование Azospirillum brasilense Sp245 для повышения эффективности микроклонального размножения смолевки меловой (Silene cretacea Fisch. ex Spreng.) // Биотехнология. – 2017. – Т. 33, №1. – С. 72-79. DOI: 10.1016/0234-2758-2017-33-1-72-79.
  164. Купряшина М.А., Ветчинкина Е.П., Буров А.М., Пономарева Е.Г., Никитина В.Е. Биосинтез золотых наночастиц бактериями Azospirillum brasilense // Микробиология. – 2014. – Т. 83. – № 1. – С. 41–48. DOI: 10.7868/S0026365614010078.
  165. Купряшина М.А., Ветчинкина Е.П., Никитина В.Е. Биосинтез серебряных наночастиц с участием внеклеточной Мn-зависимой пероксидазы азоспирилл // Прикл. биохим. микробиол. – 2016. – Т. 52, № 4. – С. 377–382. DOI: 10.7868/S0555109916040103.
  166. Купряшина М.А., Петров С.В., Пономарева Е.Г., Никитина В.Е. Лигнинолитическая активность бактерий рода Azospirillum и Niveispirillum // Микробиология. – 2015. – Т. 84, № 6. – С. 691–696. DOI: 10.7868/S0026365615060051. Kupryashina M.A., Ponomareva E.G., Nikitina V.E., Petrov S.V. Ligninolytic activity of bacteria of the genera Azospirillum and Niveispirillum // Microbiology. – 2015. – Vol. 84, N 6. – С. 791-795. DOI: 10.1134/S0026261715060041
  167. Купряшина М.А., Селиванов Н.Ю, Никитина В.Е. Выделение и очистка Mn-пероксидазы Azospirillum brasilense Sp245 // Прикл. биохим. микробиол. – 2012. –Т. 48, №1. – С. 23-26.
  168. Кушнерук М.А., Старичкова Н.И., Антонюк Л.П. Ростстимулирующие ризобактерии: реализация биотехнологического потенциала на современном этапе развития агробиотехнологий // Биомика/Biomics, спец. вып. журн. – 2012. − Т. 3, № 1. – С. 67-68.
  169. Кушнерук М.А., Тугарова А.В., Ильчукова А.В., Славкина Е.А., Старичкова Н.И., Богатырев В.А., Антонюк Л.П. Факторы, индуцирующие переход ризобактерий Azospirillum brasilense от размножения к покою // Микробиология. – 2013. – Т. 82, № 5. – С. 563-570.
  170. Матвеев В.Ю., Богатырев В.А., Дыкман Л.А., Матора Л.Ю., Шварцбурд Б.И. Физико-химические свойства клеточной поверхности S- и R- вариантов штамма Azospirillum brasilense Sp7 // Микробиология. – 1992. – Т. 61, №. 4. – С. 645-651.
  171. Матора Л.Ю., Бурыгин Г.Л., Щёголев С.Ю. Исследование иммунохимической гетерогенности липополисахаридов Azospirillum brasilense // Микробиология. – 2008. – Т. 77, № 2. – С. 196-200.
  172. Матора Л.Ю., Серебренникова О.Б., Петрова Л.П., Бурыгин Г.Л., Щеголев С.Ю. Нетипичный характер R-S диссоциации Azospirillum brasilense // Микробиология. – 2003. – Т. 72, № 1. – С. 60-63.
  173. Матора Л.Ю., Щеголев С.Ю. Антигенная идентичность липополисахаридов, капсулы и экзополисахаридов Azospirillum brasilense // Микробиология. - 2002. – Т. 71, №2. – С. 211-214.
  174. Матора Л.Ю., Шварцбурд Б.И., Щеголев С.Ю. Иммунохимический анализ О-специфических полисахаридов почвенных азотфиксирующих бактерий Azospirillum brasilense // Микробиология. –1998. – Т. 67, № 6. – С. 815-820.
  175. Никитина В.Е., Аленькина С.А., Итальянская Ю.В., Пономарева Е.Г. Очистка и сравнение лектинов с клеточной поверхности активных и неактивных по гемагглютинации клеток азоспирилл // Биохимия. 1994. Т.59, вып.5. С. 656-662.
  176. Никитина В.Е., Аленькина С.А., Пономарева Е.Г., Савенкова Н.Н. Изучение роли лектинов клеточной поверхности азоспирилл во взаимодействии с корнями пшеницы // Микробиология. 1996. Т.65, вып.2. С. 165-170.
  177. Никитина В.Е., Богомолова Н.В., Пономарева Е.Г., Соколов О.И.. Влияние лектинов азоспирилл на способность семян к прорастанию // Известия РАН. Серия биологическая. 2004. №4, С. 431-435.
  178. Никитина В.Е., Бугаева И.О., Пономарева Е.Г., Тихомирова Е.И., Богомолова Н.В. Влияние лектина Azospirillum на кинетику клеточных популяций мезентериальных лимфатических узлов и динамику цитокинового статуса экспериментальных животных // ЖМЭИ. 2002. №1. С.37-42.
  179. Никитина В.Е., Ветчинкина Е.П., Пономарёва Е.Г., Гоголева Ю.В. Активность Mn-пероксидазы и лигнин пероксидазы у бактерий рода Azospirillum // Бюллетень «Московского общества испытателей природы» Отдел Биологический, приложение 1 «Физиология и генетика микроорганизмов в природных и экспериментальных системах». ISSN 00271403. М.: МГУ им. М.В. Ломоносова. 2009. Т. 114, выпуск 2. С. 252–254.
  180. Никитина В.Е., Ветчинкина Е.П., Пономарёва Е.Г., Гоголева Ю.В. Фенолоксидазная активность бактерий рода Azospirillum // Микробиология. 2010. Т. 79, № 3. С.– 344–351.
  181. Никитина В.Е., Итальянская Ю.В., Аленькина С.А. Оптимизация состава питательной среды для биосинтеза лектина Azospirillum lipoferum 59b // Микробиологический журнал. 1997.Т.59, N 2. С 12-19.
  182. Никитина В.Е., Пономарева Е.Г., Аленькина С.А. Лектины клеточной поверхности азоспирилл и их роль в ассоциативных взаимоотношениях с растениями // Молекулярные основы взаимоотношений ассоциативных микроорганизмов с растениями // Под ред. В.В. Игнатова.- М.: Наука, 2005.С. 70-97.
  183. Никитина В.Е., Пономарева Е.Г., Аленькина С.А., Коннова С.А. Участие бактериальных лектинов клеточной поверхности в агрегации азоспирилл // Микробиология. 2001. Т.70, N 4. С.471-476.
  184. Патент RU 2678755 С1. Биологический агент для стимуляции ростовых процессов в растениях. Егоршина А.А., Лукьянцев М.А., Шаймуллина Г.Х., Лапина О.И., Зиганшин Д.Д., Голубев С.Н., Дубровская Е.В., Турковская О.В. Опубл. 31.01.2019. Бюл. № 4. Патентообладатель ООО "Органик парк" (РФ).
  185. Петров С.В., Купряшина М.А., Глинская Е.В., Никитина В.Е. Лигнин-пероксидаза фенолоксидазного комплекса ассоциативных бактерий Azospirillum brasilense // Вестник Оренбургского государственного университета. – 2014. – №13 (174). – С. 88-91.
  186. Петров С.В., Купряшина М.А., Пономарева Е.Г., Воробьева С.А., Глинская Е.В., Никитина В.Е. Скрининг бактерий рода Azospirillum по способности к продукции внеклеточной лигнин-пероксидазы и деградации модельных соединений лигнина и азокрасителей // Изв. Сарат. ун-та. Нов. сер. Сер. Химия. Биология. Экология. – 2017. – Т. 17, Вып. 2. – С. 170–176. DOI: 10.18500/1816-9775-2017-17-2-170-176.
  187. Петрова Л.П., Борисов И.В., Кацы Е.И. Плазмидные перестройки у Azospirillum brasilense // Микробиология. – 2005. – Т. 74, № 4. – С. 572–574. Petrova L.P., Borisov I.V., Katsy E.I. Plasmid rearrangements in Azospirillum brasilense // Microbiology. – 2005. – V. 74, № 4. – P. 495–497. doi: 10.1007/s11021-005-0094-8
  188. Петрова Л.П., Варшаломидзе О.Э., Шелудько А.В., Кацы Е.И. Локализация генов денитрификации в плазмидной ДНК бактерии Azospirillum brasilense // Генетика. – 2010. – Т. 46, № 7. – С. 904–910. Petrova L.P., Varshalomidze O.E., Shelud’ko A.V., Katsy E.I. Localization of denitrification genes in plasmid DNA of bacteria Azospirillum brasilense // Russ. J. Genet. – 2010. – V. 46, № 7. – P. 801–807. – doi: 10.1134/S1068162010020111
  189. Петрова Л.П., Матора Л.Ю., Бурыгин Г.Л., Борисов И.В., Кацы Е.И. Анализ ДНК, ряда культурально-морфологических свойств и структуры липополисахаридов у близкородственных штаммов Azospirillum brasilense // Микробиология. – 2005. – Т. 74, № 2. – С. 224–230. Petrova L.P., Matora L.Yu., Burygin G.L., Borisov I.V., Katsy E.I. Analysis of DNA, a number of cultural and morphological properties, and lipopolysaccharide structure in closely related strains of Azospirillum brasilense // Microbiology. – 2005. – V. 74, № 2. – P. 188–193.
  190. Петрова Л.П., Прилипов А.Г., Кацы Е.И. Выявление предполагаемых генов биосинтеза полисахаридов у штаммов Azospirillum brasilense из серогрупп I и II // Генетика. – 2017. – Т. 53, № 1. – С. 31-42. DOI: 10.7868/S0016675816110102. Petrova L.P., Katsy E.I., Prilipov A.G. Detection of putative polysaccharide biosynthesis genes in Azospirillum brasilense strains from serogroups I and II // Russ. J. Genet. – 2017. – Vol. 53, N 1. – С. 39-48. DOI: 10.1134/S1022795416110107.
  191. Петрова Л.П., Шелудько А.В., Кацы Е.И. Плазмидные перестройки и изменения в формировании биопленок Azospirillum brasilense // Микробиология. – 2010. – Т. 79, № 1. – С. 129–132. Petrova L.P., Shelud’ko A.V., Katsy E.I. Plasmid rearrangements and alterations in Azospirillum brasilense biofilm formation // Microbiology. – 2010. – V. 79, № 1. – P. 121–124. doi: 10.1134/S0026261710010169
  192. Петрова Л.П., Шелудько А.В., Кацы Е.И. Плазмидные перестройки и изменения в формировании биопленок Azospirillum brasilense // Микробиология. – 2010. – Т. 79, № 1. – С. 129–132. Petrova L.P., Shelud’ko A.V., Katsy E.I. Plasmid rearrangements and alterations in Azospirillum brasilense biofilm formation // Microbiology. – 2010. – V. 79, № 1. – P. 121–124. doi: 10.1134/S0026261710010169
  193. Пономарева Е.Г., Аленькина С.А., Никитина В.Е. Воздействие неблагоприятных факторов на лектиновую активность Azospirillum brasilense и Azospirillum lipoferum // Биотехнология. 2000. N 5, С. 19-24.
  194. Пономарева Е.Г., Бучарская А.Б., Киреев Р.А., Никитина В.Е. Влияние фукозоспецифичных лектинов на мембраны эритроцитов крыс в норме и в условиях токсического стресса in vitro // Бюлл. эксперим. биол. и медиц. 2005. Т. 140, № 10. С. 410-413.
  195. Пономарева Е.Г., Емельянова Н.В., Никитина В.Е., Захарова Н.Б. Воздействие бактериального лектина на функциональную активность лимфоцитов // ЖМЭИ. – 2007. - № 2. –С. 60-65.
  196. Пономарёва Е.Г., Н.В.Емельянова, В.Е.Никитина Влияние лектина Azospirillum brasilense Sp7 и фитогемагглютинина фасоли на цитокиновую активность лимфоцитов in vitro // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины 2011.Т. 152, № 9, С.302-305.
  197. Сигида Е.Н., Федоненко Ю.П., Здоровенко Э. Л., Бурыгин Г.Л., Коннова С.А., Игнатов В.В. Характеристика липополисахаридов бактерий рода Azospirillum,отнесенных к серогруппе II // Микробиология – 2014. – Т. 83, №4. – С. 416-425. DOI: 10.7868/S0026365614040156. Sigida E.N., Fedonenko Y.P., Burygin G.L., Ignatov V.V., Zdorovenko E.L., Konnova S.A. Characterization of the lipopolysaccharides of serogroup II Azospirillum strains // Microbiology. – 2014. – Vol. 83, N 4. – С. 326-334. DOI: 10.1134/S0026261714040158.
  198. Славкина Е.А., Кушнерук М.А., Старичкова Н.И., Антонюк Л.П. Устойчивость биотехнологически значимых ризосимбионтов пшеницы к неблагоприятным факторам среды // Биомика/Biomics, спец. вып. журн. – 2012. − Т. 3, № 1. – С. 96-97.
  199. Смолькина О.Н., Качала В.В., Федоненко Ю.П., Бурыгин Г.Л., Здоровенко Э.Л., Матора Л.Ю., Коннова С.А., Игнатов В.В. Капсульный полисахарид бактерий Azospirillum lipoferum Sp59b: структура, антигенная специфичность // Биохимия. – 2010. – Т. 35, № 5. – С. 707-716.
  200. Смолькина О.Н., Шишонкова (Величко) Н.С., Юрасов Н.А., Игнатов В.В. Капсульные и экстраклеточные полисахариды диазотрофных ризобактерий Herbaspirillum seropedicae Z78 // Микробиология. – 2012. – Т. 81, № 3. – С. 345-352.
  201. Стадник Г.И.., Калашникова Е.Е., Коннова С.А., Игнатов В.В. Роль поверхностных и внеклеточных соединений бактерий Xanthomonas campestris в патогенных взаимоотношениях с растениями капусты // Микробиология. – 2001. – Т. 70, № 2. – С. 270-274.
  202. Суркина А.К., Коннова А.С., Федоненко Ю.П., Игнатов В.В. Гликополимеры бактерий рода Azospirillum как перспективные антагонисты классических эндотоксинов // Известия Саратовского университета. Серия Химия. Биология. Экология.  2013.  Т. 13, Вып. 2.  С. 78-85.
  203. Тугарова А.В., Ветчинкина Е.П., Лощинина Е.А., Щелочков А.Г., Никитина В.Е., Камнев А.А. Способность ризобактерии Azospirillum brasilense к восстановлению селена(IV) до селена(0) // Микробиология. – 2013. – Т. 82, № 3. – С. 362–365.
  204. Тугарова А.В., Казакова А.Н., Камнев А.А., Злотский С.С. Синтез и бактерицидная активность замещенных циклических ацеталей // Журнал общей химии. – 2014. – Т. 84, Вып. 10. – С. 1652-1655.
  205. Турковская О.В., Позднякова Н.Н., Муратова А.Ю., Дубровская Е.В., Голубев С.Н. Деградационный потенциал растений и микроорганизмов в отношении полициклических ароматических углеводородов // Биомика. – 2018. – Т. 10, № 2. – С. 193-201. DOI: 10.31301/2221-6197.bmcs.2018-27.
  206. Федоненко Ю.П., Бойко А.С., Здоровенко Э.Л., Коннова С.А., Шашков А.С., Игнатов В.В., Книрель Ю.А. Структурные особенности О-специфических полисахаридов бактерий Azospirillum серогруппы III (A. brasilense 54, A. lipoferum SR66, SR85) // Биохимия. – 2011. – Т. 76, № 7. – С. 976-982.
  207. Федоненко Ю.П., Борисов И.В., Коннова О.Н., Здоровенко Э.Л., Кацы Е.И., Коннова С.А., Игнатов В.В. Установление строения повторяющегося звена О-специфического полисахарида Azospirillum brasilense SR75 и гомология lps-локусов в плазмидах Azospirillum brasilense штаммов SR75 и Sp245 // Микробиология. – 2005. – Т. 74, № 5. – С. 626–632. Fedonenko Yu.P., Borisov I.V., Konnova O.N., Zdorovenko E.L., Katsy E.I., Konnova S.A., Ignatov V.V. Determination of the structure of the repeated unit of the Azospirillum brasilense SR75 O-specific polysaccharide and homology of the lps loci in the plasmids of Azospirillum brasilense strains SR75 and Sp245 // Microbiology. – 2005. – V. 74, № 5. – P. 542–548.
  208. Федоненко Ю.П., Борисов И.В., Коннова О.Н., Здоровенко Э.Л., Кацы Е.И., Коннова С.А., Игнатов В.В. Установление строения повторяющегося звена О-специфического полисахарида Azospirillum brasilense SR75 и гомология lps-локусов в плазмидах Azospirillum brasilense штаммов SR75 и Sp245 // Микробиология. – 2005. – Т. 74, № 5. – С. 626–632. Fedonenko Yu.P., Borisov I.V., Konnova O.N., Zdorovenko E.L., Katsy E.I., Konnova S.A., Ignatov V.V. Determination of the structure of the repeated unit of the Azospirillum brasilense SR75 O-specific polysaccharide and homology of the lps loci in the plasmids of Azospirillum brasilense strains SR75 and Sp245 // Microbiology. – 2005. – V. 74, № 5. – P. 542–548.
  209. Федоненко Ю.П., Борисов И.В., Коннова О.Н., Здоровенко Э.Л., Кацы Е.И., Коннова С.А., Игнатов В.В. Установление строения повторяющегося звена О специфического полисахарида Azospirillum brasilense SR75 и гомология lps-локусов в плазмидах Azospirillum brasilense штаммов SR75 и Sp245 // Микробиология. – 2005. – Т. 74, № 5. – С. 626-632.
  210. Федоненко Ю.П., Егоренкова И.В., Коннова С.А., Игнатов В.В. Участие липополисахаридов азоспирилл во взаимодействии с поверхностью корней пшеницы (Azospirillum brasilense Sp245) // Микробиология. – 2001. – Т. 70, № 3. – С. 384-390.
  211. Федоненко Ю.П., Здоровенко Э.Л., Коннова С.А., Игнатов В.В.. Шляхтин Г.В. Сравнительная характеристика липополисахаридов и О-специфических полисахаридов Azospirillum brasilense Sp245 и его омегон-Km мутантов КМ018 и КМ252 // Микробиология. – 2004. – Т. 73, № 2. – С. 180-187.
  212. Федоненко Ю.П., Кацы Е.И., Петрова Л.П., Бойко А.С., Здоровенко Э.Л., Качала В.В., Шашков А.С., Книрель Ю.А. Структура О-полисахарида мутантного штамма азотфиксирующих ризобактерий Azospirillum brasilense Sp245 с измененным плазмидным составом // Биоорган. химия. – 2010. – Т. 36, № 2. – С. 236–240. Fedonenko Yu.P., Katsy E.I., Petrova L.P., Boyko A.S., Zdorovenko E.L., Kachala V.V., Shashkov A.S., Knirel Yu.A. The structure of the O-specific polysaccharide from a mutant of nitrogen-fixing rhizobacterium Azospirillum brasilense Sp245 with an altered plasmid content // Russ. J. Bioorg. Chem. – 2010. – V. 36, № 2. – P. 219–223.
  213. Федоненко Ю.П., Кацы Е.И., Петрова Л.П., Бойко А.С., Здоровенко Э.Л., Качала В.В., Шашков А.С., Книрель Ю.А. Структура О-полисахарида мутантного штамма азотфиксирующих бактерий Azospirillum brasilense Sp245 с измененным плазмидным составом // Биоорган. химия. – 2010. – Т. 36, № 2. – С. 236-240.
  214. Филипьечева Ю.А., Бурыгин Г.Л. Серологическая и ростостимулирующая характеристики штаммов рода Azospirillum, выделенных в Саратовской области // Аграрный научный журнал. – 2016. – № 3. – С. 44-48.
  215. Черкасова О.А., Тучин В.В., Пономарева Е.Г., Никитина В.Е. Влияние бактериального лектина и роль его углеводсвязывающего центра при воздействии на адипоциты при повышенной температуре // Биофизика.- 2007. – Т.52. –Вып.4. – С.687-692.
  216. Чернышева М.П., Аленькина С.А., Никитина В.Е., Игнатов В.В. Внеклеточные протеолитические ферменты штамма Azospirillum brasilense Sp7 и регулирование их активности гомологичным лектином // Прикл. биохимия и микробиология. 2005. Т. 41, № 4. С. 444 – 448.
  217. Шелудько А.В., Борисов И.В., Крестиненко В.А., Панасенко В.И., Кацы Е.И. Влияние конго красного на подвижность бактерий Azospirillum brasilense // Микробиология. – 2006. – Т. 75, № 1. – C. 62–69. Shelud’ko A.V. Borisov I.V., Krestinenko A.V., Panasenko V.I., Katsy E.I. Effect of Congo Red on the motility of the bacterium Azospirillum brasilense // Microbiology. – 2006. – V. 75, № 1. – P. 48–54. doi: 10.1134/S0026261706010103.
  218. Шелудько А.В., Кацы Е.И. Образование на клетке Azospirillum brasilense полярного пучка пилей и поведение бактерий в полужидком агаре // Микробиология. – 2001. – Т. 70, № 5. – C. 662–667. Shelud’ko A.V., Katsy E.I. Formation of polar bundles of pili and the behavior of Azospirillum brasilense cells in a semiliquid agar // Microbiology. – 2001. – V. 70, № 5. – P. 570–575. – doi 10.1023/A:1012364323315.
  219. Шелудько А.В., Кулибякина О.В., Широков А.А., Петрова Л.П., Матора Л.Ю., Кацы Е.И. Влияние мутаций в синтезе липополисахаридов и полисахаридов, связывающих калькофлуор, на формирование биопленок Azospirillum brasilense // Микробиология. – 2008. – Т. 77, № 3. – С. 358–363. Sheludko A.V., Kulibyakina O.V., Shirokov A.A., Petrova L.P., Matora L.Yu., Katsy E.I. The effect of mutations affecting synthesis of lipopolysaccharides and calcofluor-binding polysaccharides on biofilm formation by Azospirillum brasilense // Microbiology. – 2008. – V. 77, № 3. – P. 313–317.
  220. Шелудько А.В., Пономарева Е.Г., Варшаломидзе О.Э., Ветчинкина Е.П., Кацы Е.И., Никитина В.Е. Гемагглютинирующая активность и подвижность бактерий Azospirillum brasilense в присутствии разных источников азота // Микробиология. 2009. Т. 78, № 6. С.749–756.
  221. Шелудько А.В., Пономарева Е.Г., Варшаломидзе О.Э., Ветчинкина Е.П., Кацы Е.И., Никитина В.Е. Гемагглютинирующая активность и подвижность бактерий Azospirillum brasilense в присутствии разных источников азота // Микробиология. –2009. – Т. 78, № 6. – С. 749–756. Shelud’ko A.V., Ponomareva E.G., Varshalomidze O.E., Vetchinkina E.P., Katsy E.I., Nikitina V.E. Hemagglutinating activity and motility of the bacterium Azospirillum brasilense in the presence of various nitrogen sources // Microbiology. – 2009. – V. 78, № 6. – P. 696–702. doi: 10.1134/S0026261709060058.
  222. Шелудько А.В., Тугарова А.В., Ильчукова А.В., Варшаломидзе О.Э., Антонюк Л.П.,. Эль-Регистан Г.И., Кацы Е.И. Негативное влияние алкилрезорцинов на подвижность ризобактерий Azospirillum brasilense // Микробиология. – 2013. – Т. 82, № 4. – С. 422–427.
  223. Шелудько А.В., Широков А.А., Соколова М.К., Соколов О.И., Петрова Л.П., Матора Л.Ю., Кацы Е.И. Колонизация корней пшеницы бактериями Azospirillum brasilense с различной подвижностью // Микробиология. – 2010. – Т. 79, № 5. – С. 696–704. Shelud’ko A.V., Shirokov A.A., Sokolova M.K., Sokolov O.I., Petrova L.P., Matora L.Yu., Katsy E.I. Wheat root colonization by Azospirillum brasilense strains with different motility // Microbiology. – 2010. – V. 79, № 5. – P. 688–695. – doi: 10.1134/S0026261710050140.
  224. Широков А.А., Буданова А.А., Буров А.М., Хлебцов Б.Н., Красов А.И., Щеголев С.Ю., Матора Л.Ю. Иммуноэлектронно-микроскопическое исследование поверхности клеток штаммов Azospirillum brasilense // Микробиология. – 2017. – Т. 86. № 4. – С. 476-482.
  225. Широков А.А., Красов А.И., Селиванов Н.Ю., Бурыгин Г.Л., Щеголев С.Ю., Матора Л.Ю. Иммунохимическое выявление бактерий рода Azospirillum в почве с помощью родоспецифичных антител // Микробиология. – 2015. – Т. 84, №2. – С. 244-249. DOI: 10.7868/S0026365615020135. Shirokov A.A., Krasov A.I., Selivanov N.Y., Burygin G.L., Shchyogolev S.Y., Matora L.Y. Immunochemical detection of Azospirilla in soil with genus-specific antibodies // Microbiology. – 2015. – Vol. 84, N 2. – С. 263-267. DOI: 10.1134/S0026261715020137.
Information
Staff members
  • Professor Olga Turkovskaya, D. Sc. (Biol.), Head of Collection
  • Ekaterina Dubrovskaya, Ph.D. (Biol.), Curator
  • Anna Muratova, D. Sc. (Biol.), Bacteriologist
  • Sergey Golubev, Ph.D. (Biol.), Bacteriologist
  • Anastasia Bondarenkova, Ph.D. (Biol.), Bacteriologist
Contact Us